实验 | WB中上样与电泳操作的注意事项
免疫印迹(Immunoblotting)又称为蛋白质印迹(Western Blot,WB),是一种综合性的免疫学检测技术,用于检测细胞或组织提取物中的蛋白表达水平。
这项技术利用待检测蛋白与抗体的特异性结合,测定生物样本中的蛋白水平,已经被广泛应用并得到公认。
WB技术已广泛应用于基因在蛋白水平的表达研究、抗体活性检测和疾病早期诊断等多个方面。WB实验一般分为SDS-PAGE样本制备、凝胶电泳、转膜、封闭、抗体孵育及免疫检测等步骤。
WB实验看似比较简单,但是它步骤多,时间长,很容易出现一些意想不到的小插曲,导致实验结果不理想。本文着重讲述在WB实验中,上样与电泳时需要特别注意的地方。
凝胶制备
聚丙烯酰胺凝胶电泳简称为PAGE(Polyacrylamide gel electrophoresis),是以聚丙烯酰胺凝胶作为支持介质的一种常用电泳技术。
它有两种形式:SDS-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)及非变性聚丙烯酰胺凝胶(Native-PAGE)。聚丙烯酰胺凝胶由单体丙烯酰胺和交联剂甲叉双丙烯酰胺聚合而成,形成一个三维网状的结构,它具有分子筛效应。
自制凝胶时的注意事项
①洗净玻璃板,请勿留有残胶;
②选择合适的分离胶浓度以确保目的蛋白的迁移位置在胶的中央,高比例的凝胶具有较小的孔径,用于分离分子量较低的蛋白,低比例的凝胶具有较大的孔径,用于分离分子量较大的蛋白,具体参考下表:
分离胶浓度 | 最佳分离范围 |
6%胶 | 50-150KD |
8%胶 | 30-90KD |
10%胶 | 20-80KD |
12%胶 | 12-60KD |
15%胶 | 10-40KD |
③PH值正确,正确的保存条件,APS需新鲜配制;
④分离胶勿倒过满,凝胶需缓慢凝固,胶太硬时电泳时易烧;
⑤聚丙烯酰胺凝胶在凝固前有毒,凝固后无毒,因此操作时应戴上口罩和手套;
⑥板条与梳子厚度必须一致,否则将在点样孔中产生胶膜,影响点样和最后电泳质量。
现在很多厂家都会生产不同浓度的预制胶,方便客户使用,客户也节省了不少的时间。预制胶的优势明显,有高分辨率的数据,与主流的电泳槽兼容,上样量大,成本低等。(但是!在用预制胶的时候,切记要撕胶底或侧边的封条,并且拆胶的时候动作轻缓,防止把胶拆坏。在电泳槽中倒入电泳缓冲液,静置一会儿,拔梳齿时注意垂直,保持梳齿的平整。)
上样与电泳
01
蛋白预染Marker:采用预染色标记可以看见电泳过程中蛋白迁移的距离,为了便于观察电泳效果与转膜效果,以及判断蛋白分子量大小,在电泳时通常要使用预染的蛋白分子量标准。根据待测蛋白的分子量大小,挑选合适的Marker。
02
加入足量的样品:SDS-PAGE根据蛋白电泳迁移率将其分离,迁移率是蛋白大小和电荷的函数。我们建议在预制Tris-Glycine小孔胶上样20-30μg总蛋白或100ng纯蛋白;对于组织,我们通常建议上样量最多100μg总蛋白,具体取决于靶标表达水平;但是,如果蛋白水平低于检测值,在电泳之前可能还需要进行免疫沉淀以富集待测蛋白。
03
尽量保持每个泳道的蛋白量一样,体积尽量一致,方便后续观察蛋白的表达量。
04
空置的泳道用等体积的1x Loading Buffer补齐,防止最后的一两个样品条带上扬。
上样与电泳时还会出现哪些问题? ●●
➤如果无特异性条带,可能需要优化上样量,适当加大上样量;
➤如果出现高背景,可能需要减少上样量;
➤如果待测蛋白为多聚体,样品应充分变性还原;对于一些多重跨膜蛋白,高温下容易形成多聚物不溶物,导致上样困难,建议样品在70℃煮沸10min;
➤如果条带弯曲或拖尾,可能是凝胶制备不均匀,需核实胶配方,或重新制胶;可能是缓冲液离子强度不对,需新鲜配制缓冲液;
总的来说,WB的上样与电泳步骤还是比较简单得,但是也有很多细节需要大家注意,只有每一步的步骤都不出差错,才能保证整个WB实验的顺利进行。