大鼠免疫细胞流式检测panel!码住!

 

主持人

各位科研小能手,今天咱们来聊聊大鼠免疫细胞流式检测的“爱恨情仇”。谁来说说,做这个实验时最让你头疼的是什么?

那肯定是抗体荧光素种类少,还老缺货,挑得我眼花缭乱!

大师兄

对对对,我也是,感觉像是在玩“抗体版”的俄罗斯方块,拼拼凑凑都不够用。

二师兄

主持人

哈哈,听起来像是科研版的“极限挑战”。不过,别担心,我们今天有秘密武器——一篇关于大鼠免疫细胞流式检测Panel设计的干货文章。它不仅能帮你搞定抗体和指标选择难题,还能让你的实验方案更加“高大上”。这可是咱们的“实验宝典”,赶紧收藏起来!

本文的参考文献可以在文末下载~

 

▲DOI: 10.1159/000524682

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Part 1 实验方案

 

 

 

 

 

 

 

 

(1) Rats:骨骼成熟的雄性 Lewis 大鼠

(2) 模型:体积肌肉损失 (VML)  模型

(3) 取材:收集受伤的(胫骨前部)TA肌肉、脾脏、胸腺和肠系膜淋巴结(MLN),并将其放入含有L-谷氨酰胺的5 mL RPMI培养基中。

(4) 消化:然后用剪刀将标本彻底切碎,并加入 5 mL 1 mg/mL LiberaseTM(Roche,S#5401127001)和 0.4 mg/mL DNase I(Roche,#10104159001)消化液。37℃,100 rpm 的培养摇床上消化。

(5) 流式细胞仪: 5 Laser Cytek® Aurora Spectral Flow Cytometer

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Part 2  流式抗体

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Part 3 圈门逻辑

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Part 4  流式结果

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Part 5  相关指标及其克隆号选择

 

 

 

 

 

 

 

 

 🔷 BOX 1 B细胞

(1)CD45R (HIS24) 

(2)CD45RA(OX-33)

 

 

 

🔷 BOX 2 T细胞

(1)Pan-T Cells:CD6(OX-52)

(2)CD3:G4.18、1F4

(3)CD4:OX-35、W3/25、OX-38

(4)CD8:OX-8、341、G28

 

 

 

🔷 BOX 3 单核/巨噬细胞

(1)组织中 HIS36 的特异性更好,血液中 HIS36 不表达。 

(2)血液中可以用 CD68(ED1、QA20A71),但是 CD68也表达在单核细胞上,可能并不是很纯。

(3)大鼠单核细胞CD4+CD3-

(4)M1: CD86(24F)、CD80(3H5)

(5)M2: CD163(HIS36、ED2、GHI/61)

 

▲Doi: 10.3791/54599

 

 

🔷 BOX 4 NK细胞

(1)CD161a:10/78、3.2.3

(2)CD8+CD3-

 

 

 

🔷BOX 5 粒细胞

HIS48(单核也表达),可通过前项散射光和侧向散射光区分粒细胞和单核细胞。

 

 

 

🔷 BOX 6 树突状细胞

CD103: OX-62

 

 

 

🔷 BOX 7 通用marker

(1)CD45 (OX1)

(2)CD11b/c (OX42)

 

 

太棒啦,这篇文章真的受益匪浅。

大师兄

是啊,我还学到了不少新技巧,原来有这么多克隆号我不知道。

二师兄

主持人

看来大家都收获满满啊!希望这篇文章能成为你们实验路上的“神助攻”,让我们的大鼠免疫细胞流式检测更加顺畅、高效。科研路上,我们一起“嗨”起来!

主持人

如果对本次分享的流式方案或者在流式实验中有任何问题,都可以加入我们的流式互助群,群内有很多正在做流式实验的同学,大家可以一起交流探讨!

 

 

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本文参考文献,可添加小助手,回复“ 流式1218 ” 下载!

[1] Adusei KM, Ngo TB, Alfonso AL, Lokwani R, DeStefano S, Karkanitsa M, Spathies J, Goldman SM, Dearth CL, Sadtler KN. Development of a High-Color Flow Cytometry Panel for Immunologic Analysis of Tissue Injury and Reconstruction in a Rat Model. Cells Tissues Organs. 2023;212(1):84-95. doi: 10.1159/000524682. Epub 2022 Apr 22. PMID: 35462366.

[2] Rubio-Navarro A, Guerrero-Hue M, Martín-Fernandez B, Cortegano I, Olivares-Alvaro E, de Las Heras N, Alía M, de Andrés B, Gaspar ML, Egido J, Moreno JA. Phenotypic Characterization of Macrophages from Rat Kidney by Flow Cytometry. J Vis Exp. 2016 Oct 18;(116):54599. doi: 10.3791/54599. PMID: 27805599; PMCID: PMC5092211.  

 

 

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创建时间:2024-12-19 16:31
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